實(shí)驗(yàn)十七 細(xì)菌、放線菌、酵母菌、霉菌的菌落觀察和細(xì)菌菌落制片
一、墓本原理
菌落形態(tài)是指某種微生物在一定的培養(yǎng)基上由單個(gè)菌體形成的群體形態(tài)。細(xì)菌、放線菌、酵母菌和霉菌,每一類微生物在一定培養(yǎng)條件下形成的菌落各具有某些相對(duì)的特征,利用觀察這些特征,來(lái)區(qū)分各大類微生物及初步識(shí)別、鑒定微生物,方法簡(jiǎn)便快速,在科研和生產(chǎn)實(shí)踐中常被采用。
利用血液培養(yǎng)基富有營(yíng)養(yǎng)及粘性等特性來(lái)培養(yǎng)細(xì)菌,在此培養(yǎng)基上生長(zhǎng)的菌落在固定時(shí)粘性很大,能夠牢固地附著在載玻片或蓋玻片上,便于制片和觀察。另外,血液培養(yǎng)基又是較好的保存菌種用培養(yǎng)基,故由此培養(yǎng)基所制的菌落制片能保存較長(zhǎng)時(shí)間。
二、器材
圓褐固氮菌,枯草芽孢桿菌,灰色鏈霉菌,釀酒酵母,青霉的單個(gè)菌落平板,白色葡萄球菌(Staphylococcus albus);
Bouin氏固定液,0.01%結(jié)晶紫溶液,羊血或兔血,肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基,酒精等。
三、操作步驟
1.觀察圓褐固氮菌、枯草芽孢桿菌、灰色鏈霉菌、釀酒酵母、青霉的單個(gè)菌落特征,并按實(shí)驗(yàn)一菌落特征描述的方法記錄結(jié)果。
2.血液瓊脂培養(yǎng)基的制備:
(1)成分pH7.6肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基10ml,無(wú)菌脫纖維羊血(或兔血)1ml。
(2)將肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基加熱溶化。
(3)待冷至45℃時(shí),以無(wú)菌操作加1ml無(wú)菌脫纖維羊血于培養(yǎng)基內(nèi),立即搖蕩使血液和瓊脂培養(yǎng)基充分混勻。
(4)迅速以無(wú)菌操作倒入平板,使成血液瓊脂平板,注意不要產(chǎn)生氣泡。
(5)置37℃過夜,如無(wú)菌生長(zhǎng)即可使用。
(6)將無(wú)菌的平板取出進(jìn)行劃線接種分離單個(gè)菌落,因要保持瓊脂表面完整,接種改用圓頭光滑玻棒,注意不要把瓊脂劃破。接種后,倒置于37℃溫室中培養(yǎng),次日觀察結(jié)果。如有單獨(dú)菌落出現(xiàn),即可進(jìn)行下項(xiàng)實(shí)驗(yàn)。
3.細(xì)菌菌落制片
(1)細(xì)菌菌落印取選擇一個(gè)較小的單獨(dú)菌落,用小刀將菌落周圍約10—15mm的正方瓊脂切下,將此瓊脂塊上長(zhǎng)有菌落的一面朝下,輕放在蓋玻片上,然后連同瓊脂塊將蓋玻片小心放于Bouin氏固定液中約1小時(shí),直至瓊脂*變?yōu)榘咨笕〕觯瑢傊⌒膭內(nèi)ィ瑒儠r(shí)注意勿損傷菌落,僅使菌落留下,附著在蓋玻片上。
(2)用細(xì)水流輕輕沖洗附有菌落的蓋玻片。
(3)用0.01%結(jié)晶紫染液染色3分鐘后水洗,吸干。
(4)脫水將蓋玻片置于由低濃度到高濃度的酒精中(35%、50%、60%、70%、80%、95%、100%)各5分鐘,但在100%酒精中浸15分鐘。
(5)透明取出經(jīng)過脫水的蓋玻片,再放入二甲苯中2分鐘。
(6)封固從二甲苯中取出蓋玻片,用軟紙拭去菌落周圍的二甲苯。隨即加一小滴加拿大乳膠于一潔凈載玻片的*,迅速反轉(zhuǎn)蓋玻片,輕輕地放在載玻片上,使加拿大乳膠鋪滿蓋玻片,注意不要產(chǎn)生氣泡,如果有氣泡即輕輕壓出。用低倍顯微鏡觀察其菌落特征。待乳膠*干燥,一二天后裝木匣內(nèi)保存。
四、實(shí)驗(yàn)報(bào)告
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