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目錄:優利科(上海)生命科學有限公司>>科研試劑盒>>PCR試劑盒>> 鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)

鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)
  • 鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
  • 品牌 YLKBIO
  • 型號
  • 廠商性質 生產商
  • 產品資料 查看pdf文檔
  • 所在地 上海
屬性

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更新時間:2024-06-26 13:33:28瀏覽次數:880評價

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供貨周期 現貨 規格 50T
貨號 YLK10008P 應用領域 化工,生物產業
主要用途 科研實驗 英文名稱 Duck Plague Virus Detection Kit
保存條件 -20℃±5℃,避光保存 有效期 12個月
試劑盒說明 不同批號試劑不能混用 運輸方式 快遞形式
鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)適用于檢測病鴨血液、口腔偽膜及潰瘍處粘液、肝、脾、腎等組織樣品 等樣本中的鴨瘟病毒,用于鴨瘟病毒感染的輔助診斷。

【產品名稱】

通用名稱:鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)

Name :Duck Plague Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規格】50T/盒

【預期用途】

鴨瘟,又稱鴨病毒性腸炎,是由皰疹病毒科鴨瘟病毒(Duck Plague Virus, DPV) 引起的一種急性(有時呈慢性)鴨、鵝和天鵝接觸性傳染病。其特征為體溫升高,兩腿麻痹,下痢,流淚和部分病鴨頭頸腫大。食道粘膜有小出血點,并有灰黃色假膜覆蓋或潰瘍,泄殖腔粘膜充血出血水腫和假膜覆蓋。肝有不規則大小不等的出血點和壞死灶[1]。本病傳播迅速,發病率和死亡率高,嚴重威脅養鴨業發展。

本試劑盒適用于檢測病鴨血液、口腔偽膜及潰瘍處粘液、肝、脾、腎等組織樣品   等樣本中的鴨瘟病毒,用于鴨瘟病毒感染的輔助診斷。

【檢驗原理】

鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)對鴨瘟病毒基因組保守區設計特異性引物和探針[1-3],用熒光 PCR 技術對鴨瘟病毒的核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

名         稱

規         格

酶液

50μL×1 管

DPV 反應液

500μL×2 管

DPV 陽性質控品

50μL ×1 管

陰性質控品

250μL ×1 管







注:

1)  不同批號試劑不能混用。

2)  試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列

熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

在發病早期,無菌采集病鴨血液或刮取口腔偽膜及潰瘍處粘液;在動物死亡后,

無菌采取肝、脾、腎等組織樣品

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本

運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1.  樣品處理(樣本處理區)

1.1  樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術/剪剪碎混勻后取0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;粘液直接取 100μL 提取

1.2 DNA 提取

推薦采用公司生產的 DNA/提取試劑盒(離心柱提取

法),請按照試劑盒說明書進行操作。

2.  試劑配制(試劑準備區)

根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

試劑

DPV   反應液

酶液

用量(樣本數為   N)

20μL

1μL

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21uL/管。

3.  加樣(樣本處理區)

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.  PCR 擴增(核酸擴增區)

4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

 

4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye) NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3 推薦循環參數設置:

步驟

循環數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1   cycle

95℃

10min

2

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec

5.  結果分析判定

5.1  結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

5.2  結果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線;

可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38, 且曲線有明顯的增長曲線,判定為陽性,否則為陰性;

陰性:樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質控標準

陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

? 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

? 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

? 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

? 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定   量檢測不準確的結果;

? 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

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