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化工儀器網>產品展廳>生命科學儀器>細胞培養儀器>細胞培養系統> 溶液(0.25%,不含EDTA)

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溶液(0.25%,不含EDTA)

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      目前已上市了600多種蛋白提取試劑盒(動物、植物、細菌、昆蟲、酵母等樣本及細胞器提取)及上千種的細胞檢測的相關產品-細胞凋亡、增殖毒性、細胞周期、膜電位檢測、細胞器熒光探針、活性氧ROS檢測、細胞自噬、細胞耗氧OCR、細胞外酸化率ECAR、缺氧檢測、粘附檢測、鈣離子檢測、膜通透性轉換孔檢測、膜流動性檢測、外泌體、囊泡提取等。

 

蛋白提取,細胞分析

保存溫度
-20℃保存
注意事項
1、長期存放請分裝后-20℃保存。
2、避免反復凍融。
3、凍存后溶解時注意重新混勻。
有效期
一年
儀器準備
1. 細胞培養設備
2. 離心機
3. 移液器
4. 冰箱
5. 冰盒
試劑準備
1.PBS 緩沖液 或者HBSS
耗材準備
1.離心管
2.吸頭
使用注意事項
1.盡量減少反復凍融的次數,以免失效。
2.在使用溶液的過程中,要特別注意避免溶液被細菌污染。
3.溶液消化細胞時間不宜過長,否則細胞鋪板后生長狀況會較差。
4.以下步驟僅供參考,以實際使用習慣為準。
使用方法
1. 貼壁細胞的消化:
(1) 吸除培養液,用無菌PBS、Hanks液或無血清培養液洗滌細胞一次,以去除殘余的血清。
(2) 加入少量溶液,略蓋過細胞即可。室溫放置0.5~2min,不同的細胞消化時間有所不同。
(3) 顯微鏡觀察,如果細胞明顯收縮并且肉眼觀察培養器皿底部發現細胞的形態發生明顯的變化;或者用槍頭吹打細胞發現細胞剛好可以被吹打下來,吸除溶液。加入含血清的細胞培養液,吹打下細胞,即可直接用于后續實驗。
(4) 如果發現消化不足,則再加入溶液重新消化。
(5) 如果發現細胞消化時間過長,未及吹打細胞,細胞已經有部分直接從培養器皿底部脫落,直接用溶液把細胞全部吹打下來。1000~2000g離心1min,沉淀細胞,盡量去除溶液后,加入含血清的培養液重新懸浮細胞,即可用于后續實驗。

2. 組織的消化:
不同的組織需要消化的時間差異很大,通常以消化后可以充分打散組織為宜。


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