北京易科泰生態技術有限公司成立于2002年，為中關村高新技術企業，致力于生態-農業-健康研究監測技術推廣、研發與服務，特別是在光譜成像技術（高光譜成像技術、葉綠素熒光成像技術、紅外熱成像技術、無人機遙感等）、植物表型分析技術、呼吸與能量代謝測量技術等方面，與專業企業PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科學、土壤與地球科學、動物能量代謝、水體與藻類及生態環境領域先進儀器技術的引進推廣和技術研發集成，為植物/作物表型分析、生態修復及生態保護、能量代謝測量等提供規劃設計、技術方案與系統集成、技術咨詢與科技服務。公司技術團隊80％以上具備碩士或碩士以上學位，并與*研究生院、中科院植物研究所、中科院動物所、中科院地理科學與資源研究所、中國農科院、中國林科院、中國環科院、中國水科院、清華大學、中國農業大學、北京林業大學、北京大學、中國海洋大學、陜西師范大學、內蒙古大學等建立了長期的技術合作交流關系。
公司下設有葉綠素熒光技術與植物表型業務部、EcoTech®實驗室、光譜成像與無人機遙感事業部及無人機遙感研究中心（與陜西師范大學合作建立）、動物能量代謝實驗室、內蒙古阿拉善蒙古牛生態牧業研究院及青島分公司。實驗室擁有葉綠素熒光成像、葉綠素熒光儀、水體藻類熒光儀、SPECIM高光譜儀、WORKSWELL紅外熱成像儀、EasyChem全自動化學分析儀、MicroMac1000水質在線監測系統、ACE土壤呼吸自動監測系統、SoilBox便攜式土壤氣體通量測量系統、動物呼吸測量系統、LCpro 光合作用測量儀、Hood土壤入滲儀、年輪分析儀等各種儀器設備，可以進行實驗研究分析、實驗培訓等，歡迎與易科泰生態研究室開展合作研究。
易科泰公司與歐洲PSI公司（葉綠素熒光技術與表型分析技術）、美國SABLE公司（動物能量代謝技術）、歐洲SPECIM公司（高光譜成像技術）、歐洲WORKSWELL公司（紅外熱成像技術）、歐洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技術）、歐洲BCN無人機遙感中心、歐洲ITRAX公司（樣芯密度掃描與元素分析）、美國VERIS公司、英國ADC公司、德國UGT公司、歐洲SYSTEA公司等著名生態儀器技術領域的研發機構和廠商建立了密切的合作關系，在FluorCam葉綠素熒光成像與熒光測量技術、PlantScreen植物表型分析技術、高光譜成像技術、紅外熱成像技術、光合作用與植物生理生態研究監測、土壤呼吸與碳通量研究監測、動物呼吸代謝測量、水質分析與藻類研究監測、CoreScanner樣芯密度CT與元素分析技術、LIBS元素分析技術、無人機生態遙感技術等生態儀器技術及其系統方案集成有著豐富的經驗，成為我國農業、林業、地球科學、生態環境研究等領域科技進步的重要研究技術支持力量。由公司研制生產的EcoDrone®無人機遙感平臺、SoilTron®多功能小型蒸滲儀技術、SoilBox®土壤呼吸測量技術、PhenoPlot®輕便型作物表型分析系統、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度監測系統、植物生理生態監測技術、動物能量代謝測量技術等，在中科院修購項目、*學科群項目、CERN網絡（生態系統監測網絡）等項目中發揮重要作用。
“工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司將秉承“利其器，善其事”的經營理念，為國內生態-農業-健康研究與發展提供優秀的技術方案和服務。
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土壤與植物生理生態研究監測、環境氣象監測、水文水質及地下水監測、水土保持研究監測、荒漠化監測、精準農業以及動物生態研究等儀器技術的引進推廣和系統集成,并為生態環境實驗研究和規劃設計提供技術方案和分析測量。
| 產地類別 | 進口 | 價格區間 | 面議 |
|---|---|---|---|
| 應用領域 | 環保,化工,生物產業,農業,能源 |
熱釋光(Thermoluminescence，縮寫TL)是晶體受到輻射照射后，產生了自由電子。這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來，在加熱過程中以光形式釋放出來。葉綠素熱釋光則是由于活化能壘在生理溫度下限制了諸如電子再結合等暗反應，因此光化學反應中分離的電子對穩定存在于電子載體中。在熱刺激下， S2QA-，S2QB- 和 S3QB-電子對的再結合，使PSII中激發的單線態葉綠素分子發出熱釋光。然后，逐漸升高溫度會增加再結合的比率，從而激發不同類型的電子對形成TL譜帶。葉綠素熱釋光能夠揭示光合放氧復合物（OEC）穩定性及PSII總體完整性、QB受體損傷及葉綠體內腔 pH值變化等光系統 II的深層運轉機理。
TL6000植物熱釋光測量系統是目前商用化的葉綠素熱釋光測量儀器，針對研究PSII能量水平結構進行了專門設計。PSII反應中心光誘導電荷分離導致儲存了吸收光能的激發電子對的累積。加熱誘導這些激發電子對的重組，從而引發光釋放，并在一定溫度范圍內形成特異性熱釋光曲線。TL6000植物熱釋光測量系統根據不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值，可以研究分析關于特定激發電子對的能量穩定性及PSII反應中心功能等。TL6000為這一系統的新型號，大測量范圍為-100°C到+200°C，使用范圍更寬，可以對低溫、高溫段熱釋光進行研究。
應用領域
無損傷測量PSII電子傳遞
PSII對生物/非生物脅迫與結構修飾的適應和應答
脅迫條件下葉綠體內能量不平衡的敏感性檢測
類囊體膜PSII氧化還原反應
基于峰值溫度轉換，對供體側與受體側的氧化還原電位變化進行解釋
通過測量熱釋光震蕩模式，指示S狀態轉換和放氧復合體狀態
典型樣品
植物碎片
各種微藻
葉綠體懸浮液
類囊體懸浮液
工作原理
熱釋光(Thermoluminescence，縮寫TL)是晶體受到輻射照射后，會產生自由電子，這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來，在加熱過程中以光形式釋放出來。其基本的實驗過程是將葉片快速冷凍到某一溫度，之后給葉片一個足夠強，但時間盡量短（一般<5µs）的單反轉光（single turn-over ?ash），用于誘導每個PSII反應中心發生僅一次的電荷分離；然后逐漸升溫，同時測量葉片放出的熱釋光，繪制TL譜帶。
TL植物光合熱釋光測量系統使用能量足夠強的LED光源，所釋放5-10µs的方波脈沖能夠飽和所有的PSII反應中心，其溫度控制單元可以在降溫后，再使樣品的溫度以0.1℃/sec到1.5℃/sec的速率線性增加。不同的閃光序列及樣品處理能夠使樣品處于不同的能量狀態，不同的溫度下釋放的光能源自光合機構的不同結構。分析釋光曲線的形狀、峰位和峰值，可以研究分析關于特定激發電子對的能量穩定性及PSII反應中心功能等。
熱釋光（TL）譜帶的來源及意義
不同型號的控溫方式與范圍
具體型號 | 控溫方式 | 控溫范圍 |
TL 6000/ST標準版 | Peltier控溫器+水冷單元 | -25℃到+70℃ |
TL 6000/ET溫度擴展版 | 電阻加熱器+液氮制冷單元 | -100℃到+200℃ |
系統組成
TL系列植物光合熱釋光測量系統由3部分組成：主控制分析單元、外部制冷單元、測量室。
主控制分析單元：根據用戶定義方案或軟件內置的實驗程序來執行實驗過程并采集數據。彩色顯示屏可實時顯示測量曲線。
外部制冷單元：
水冷單元（TL 6000/ST標準版配備）：包含一個電子控制的抽水泵和內部儲水的制冷器，用于測量室降溫。
液氮制冷單元（TL 6000/ET溫度擴展版配備）：將液氮罐通過管路連接到測量室，通過電子控制的低溫輸出閥可以將測量室溫度控制到低-100℃。同時也用于測量結束后給測量室降溫。
測量室：包括四個關鍵組成部分：光源、光電倍增管傳感器、溫度控制器、樣品盤。
技術參數
· 溫度范圍：
TL 6000/ST標準版：-25℃到+70℃
TL 6000/ET溫度擴展版：-100℃到+200℃
· 控溫模式：線性升溫
· 大線性升溫速度：TL 6000/ST標準版1.5ºC/sec，TL 6000/ET溫度擴展版1.8ºC/sec
· 溫度調控方式：TL 6000/ST標準版：Peltier控溫器+水冷單元；TL 6000/ET溫度擴展版：電阻加熱器+液氮制冷單元
· 小采樣周期：100ms
· 過熱保護：提供
· 環境光保護：提供
· 控制模式：手動（恒溫）；程序設定溫度曲線
· 樣品盤：鍍金銅盤，TL 6000/ST標準版直徑14mm，TL 6000/ET溫度擴展版直徑22mm
· 測量樣品：藻類、藍藻、葉綠體懸浮液，葉片等
· 單反轉飽和脈沖：波長lmax=627nm，大光強250000µmol(photons).m-2.s-1
· 光化光：波長lmax=627nm，大光強2000µmol(photons). m-2.s-1
· 探測傳感器：通過軟件靈敏控制的光電倍增管
· 光譜響應：300nm-900nm
· 接通延遲：100ms
· 控制：用戶可通過編程語言自定義程序控制儀器測量過程
· 通訊：RS232串口/USB
· 軟件：FluorWin 3.7
· 電源：90V-240V
操作軟件與實驗結果
典型應用
中科院植物所盧從明研究員是國內早將TL熱釋光技術用于植物光合研究的科學家之一，其的團隊也一直位于這一研究的前沿。上圖即為2016年發表的文獻，通過測量施加DCMU和不同光照條件的葉綠素熱釋光曲線，評估谷胱甘肽還原酶2對擬南芥PSII維持功能的作用（Ding，2016）。
產地：歐洲
參考文獻：
OHP1, OHP2, and HCF244 form a transient functional complex with the photosystem II reaction center, Y Li, et al, 2019. Plant Physiology 179, 195–208
Antimycin A inhibits cytochrome b559-mediated cyclic electron flow within photosystem II, D Takagi, et al, 2019. Photosynthesis Research 139(1–3), 487–498
'Birth defects' of photosystem II make it highly susceptible to photodamage during chloroplast biogenesis, D Shevela, et al, 2019. Physiologia Plantarum 166, 165–180
High light acclimation of Chromera velia points to photoprotective NPQ, E Belgio, et al, 2018. Photosynthesis Research 135(1–3), 263–274
Comparison of photosynthetic performances of marine picocyanobacteria with different configurations of the oxygen-evolving complex, F Partensky, et al, 2018. Photosynthesis Research 138(1), 57–71
Diel regulation of photosynthetic activity in the oceanic unicellular diazotrophic cyanobacterium Crocosphaera watsonii WH8501, T Masuda, et al, 2018. Environmental Microbiology 20(2), 546–560
Glutathione reductase 2 maintains the function of photosystem II in Arabidopsis under excess light, S Ding, et al, 2016. Biochimica et BiophysicaActa (BBA) – Bioenergetics1857(6), 665–677
Titanium dioxide nanoparticles (100–1000 mg/l) can affect vitamin E response in Arabidopsis thaliana, R Szymańska, et al, 2016. Environmental Pollution 213, 957–965
The N-terminal sequence of the extrinsic PsbP protein modulates the redox potential of Cyt b559 in photosystem II, T Nishimura, et al, 2016.Sci Rep. 6, 21490.
The PsbY protein of Arabidopsis Photosystem II is important for the redox control of Cytochrome b 559, L von Sydow, et al, 2016. Biochimica et BiophysicaActa (BBA) – Bioenergetics1857 (9),1524–1533
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